**蛋白提取與純化的實(shí)驗手冊

不同的蛋白質(zhì)分離純化的方法不同，但蛋白質(zhì)分離純化的操作步驟基本類(lèi)似，那么如何進(jìn)行**蛋白的提取呢？這里總結**蛋白的提取的實(shí)驗試劑、操作步驟以及些注意事項。
實(shí)驗試劑
采用T7? Tag Affinity Purification Kit
T7?Tag抗體瓊脂。B/W緩沖液：4.29mM Na2HPO4，1.47 mM KH2PO4，2.7 mM KCl， 0.137mM NaCl，1%吐溫-20，pH7.3 洗脫緩沖液: 0.1M檸檬酸，pH2.2. 中和緩沖液：2M Tris，pH10.4。 PEG 20000。

實(shí)驗步驟
1.100ml 含重組表達質(zhì)粒的菌體誘導后，離心5000g×5min，棄上清，收獲菌體，用10ml預冷的B/W緩沖液重懸。
2. 重懸液于冰上超聲處理，直至樣品不再粘稠，4℃離心 14000g×30min，取上清液，0.45μm膜抽濾后作為樣品液。
3. 將結合T7?Tag抗體的瓊脂充分懸起，平衡至室溫，裝入層析柱中。
4. B/W緩沖液平衡后樣品液過(guò)柱。
5. 10ml B/W緩沖液過(guò)柱，洗去未結合蛋白。
6. 用5ml洗脫緩沖液過(guò)柱，每次1ml，洗脫液用含150μl中和緩沖液的離心管收集，混勻后置于冰上，直接SDS-PAGE分析。
7. 將洗脫下來(lái)的蛋白放入透析袋中，雙蒸水透析24hr，中間換液數次。
8. 用PEG 20000濃縮蛋白。
注意事項
蛋白在過(guò)層析柱前，要0.45μm膜抽濾，否則幾次純化后，柱子中會(huì )有不溶物。

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